Livestock Research for Rural Development 31 (11) 2019 | LRRD Misssion | Guide for preparation of papers | LRRD Newsletter | Citation of this paper |
La connaissance de la diversité de la flore mellifère algérienne est indispensable à l’identification des zones favorables à l’apiculture. Cette étude a évalué la diversité de la flore mellifère de la Numidie (Nord-Est algérien). Des observations directes et périodiques durant deux années, 2017 et 2018, de ruchers au niveau de 15 stations distribuées dans 5 wilayas, nous ont permis de recenser 192 espèces mellifères rattachés à 42 familles, surtout des Fabaceae, Asteraceae, Lamiaceae, Rosaceae et Apiaceae. Les espèces à forte valeur apicole (26) représentent 13,5 % de la richesse totale et sont plus fréquentes durant la saison pluvieuse.
L’apport de l’analyse pollinique à la connaissance des plantes butinées par les abeilles est de 76%. Au total, 239 espèces ont été recensées grâce à ces deux méthodes, dont le ¼ (47 espèces) ont été révélées seulement par l’analyse du miel. L’analyse pollinique et l’observation directe de terrain sont donc deux méthodes d’étude qui se complètent.
Mots clés : analyse pollinique, Apis mellifera L, Numidie, plante mellifère, saison
The knowledge of the diversity of Algerian melliferous flora is essential for the identification of areas favorable to beekeeping. This study evaluated the diversity of the honey flora of Numidia (North-East Algeria). Direct and periodic observations over two years, 2017 and 2018, of apiaries at 15 stations distributed in 5 wilayas, allowed us to identify 192 melliferous species related to 42 families, especially Fabaceae, Asteraceae, Lamiaceae, Rosaceae and Apiaceae. High-value bee species (26) account for 13.5% of total wealth and are more frequent during the rainy season.
The contribution of pollen analysis to the knowledge of plants pollinated by bees is 76%. A total of 239 species were identified by these two methods, of which ¼ (47 species) were revealed only by honey analysis. The pollen analysis and direct field observation are therefore two methods of study that complement one another.
Key words: Apis mellifera L, melliferous plant, Numidia, pollen analysis, season
L’abeille joue un rôle vital de régulation et du maintien de la biodiversité et de l’équilibre écologique (Adjilane et al 2012). En effet, les plantes mellifères offrent aux abeilles des ressources alimentaires, notamment du nectar, du pollen et de la résine et qui, en contrepartie, assurent leur pollinisation. Les plantes mellifères sont soumises à une adaptation climato-géographique (Makhloufi et al 2015) auxquelles correspondent des zones de végétation très diversifiées (Louveaux et Abed 1984). Il est bien connu que les produits de la ruche reflètent en quantité et en qualité la nature des plantes butinées (Dongock et al 2017, Hamel et Boulamtafes 2017).
Ainsi, plusieurs études ont été entreprises afin d’améliorer nos connaissances sur la flore mellifère du monde et sur les ressources alimentaires dont disposent les abeilles en fonction des facteurs écologiques essentiels. Ces connaissances progressent d’année en année, notamment en Algérie. Plusieurs travaux ont été réalisés surtout au Nord algérien qui est réputé par ses zones d’importance pour les plantes (ZIP) (Yahi et al 2012). Parmi les travaux sur ce thème, ceux de Mekious et al (2018) dans la Mitidja, Mekious et al (2015) dans la région de Djelfa, Belhadi et Benabdeli (2010) dans la wilaya de Mascara et Makhloufi et al (2010) dans 66 stations du Tell algérien sont les plus récents.
En outre, le Nord-Est algérien ou la Numidie (K3 au sens de la subdivision biogéographique proposée par Quézel et Santa 1962) représente une aire de production apicole potentiellement importante du fait de sa flore mellifère abondante et variée (Boutabia et al 2016 ; Hamel et Boulemtafes 2017). Dans cette région, les travaux relatifs à la connaissance des plantes apicoles portent généralement sur leur inventaire (Telailia et al 2011), l’analyse pollinique des miels (Chefrour et al 2009 ; Benaziza-Bouchema et Schweitzer 2010 ; Nedji et Loucif-Ayad 2014 ; Achou et al 2015 ; Boutabia et al 2016), ainsi que la relation plantes mellifères-abeilles (Hamel et Boulemtafes 2017).
La flore mellifère est très diversifiée, ainsi pour l’étudier il serait nécessaire de réaliser une étude basée à la fois sur des études botaniques réalisées sur le terrain ainsi que sur une analyse pollinique d’échantillons de miel permettant d’obtenir une image fidèle et relativement complète des ressources mellifères de la région d’étude.
Les sorties ont été réalisées dans 5 wilayas (départements) du Nord-Est algérien (Tableau 1 et Figure 1) : trois wilayas littorales : d'est en ouest, El Tarf, Annaba et Skikda; y deux wilayas à caractère nettement continental : Souk-Ahras et Guelma. Cette région d’étude est limitée au nord par la mer méditerranée et au sud par le Tell Constantinois. Elle longe à l'est la frontière tunisienne et à l’ouest la wilaya de Skikda.
Les précipitations moyennes sont de l'ordre de 750 mm par an à Annaba et Skikda, 910 mm à la Calle-El Tarf, 670 mm à Guelma et 729 mm à Souk Ahras, pouvant atteindre près de 1 240 mm à Ain Zena (Seltzer 1946). Ainsi, toute une gamme de variantes bioclimatiques et d'ambiances de végétation depuis l'humide jusqu'au sub-humide (Cote 1974) peuvent être parcourues.
Tableau 1. Cordonnées des stations des ruches échantillonnées |
|||||
Wilaya |
N |
Localité |
Coordonnées |
Altitude |
Type de végétation |
1 |
Hammam Debagh |
36°27'52"N;7°15'39"E |
309 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
2 |
Heliopolis |
36°31'21"N;7°26'25"E |
288 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
3 |
Megsmia |
36°27'8"N;7°46'28"E |
244 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
Souk Ahras |
4 |
El Henancha |
36°15'14"N;7°46'36"E |
815 |
Maquis à genêts et calicotome |
5 |
Ain Zena |
36°21'53"N;8°6'7"E |
885 |
Maquis à genêts et calicotome |
|
6 |
Ain Sanour |
36°19'19"N;7°53'36"E |
554 |
Maquis à genêts et calicotome |
|
El Tarf |
7 |
Nador |
36°37'45"N; 8°6'11"E |
265 |
|
8 |
Lac Bleu |
36°54'45"N;8°20'21"E |
55 |
Maquis à chêne kermès (Quercus coccifera L.) |
|
9 |
Bouhadjar |
36°31'55"N;8°5'55"E |
251 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
Annaba |
10 |
Sidi Amar |
36°49'12"N;7°40'35"E |
183 |
Maquis à oléo-lentisque |
11 |
Ain sepsi |
36°56'39"N;7°24'18"E |
122 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
12 |
Cap Takouch |
37° 4'31"N;7°22'37"E |
154 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
Skikda |
13 |
Guerbes |
37° 0'5"N;7°16'6"E |
5 |
Maquis à chêne kermès (Quercus coccifera L.) |
14 |
Stora |
36°54'19"N;6°52'53"E |
5 |
Maquis à genêts et calicotome |
|
15 |
Azzaba |
36°46'22"N;7° 7'8"E |
63 |
Maquis à oléo-lentisque |
|
Figure 1. Localisation des stations d’observation des plantes mellifères |
Les observations ont été faites à raison de deux fois par semaine pour chaque saison durant les 4 saisons des années 2017 et 2018, dans la plage horaire 8h à 11h. Les plantes dont les fleurs ont été butinées par des abeilles ouvrières pendant au moins deux minutes ont été considérées comme des plantes mellifères.
L’identification des plantes apicoles s’est faite en consultant la flore de Maire (1952-1987), celle de Quézel et Santa (1962) et de Pignatti (1982). La nouvelle nomenclature a été mise à jour pour les espèces inventoriées, en tenant compte des travaux récents compilés dans l’index synonymique et bibliographique de la flore d’Afrique du Nord (Dobignard et Chatelain 2010-2013) et le site web de la base de données des plantes d’Afrique [http ://www.ville–ge.ch/ musinfo/bd/cjb/africa/recherche.php?langue=fr]. La liste des plantes apicoles a été dressée par famille selon leurs caractéristiques botaniques, la couleur des fleurs et la période de floraison selon la flore de Maire (1952-1987) et le site web eflore de Tela Botanica [https://www.tela-botanica.org/bdtfx-nn-41475-synthese].
L’analyse pollinique a été réalisée selon la méthode établie par la commission de botanique apicole et décrite par Louveaux et al (1978) ainsi que Von Der Ohe et al (2004). Les préparations ont été explorées à l’aide d’un microscope photonique à différents grossissements (× 100, × 400 et × 1 000). L’identification de pollen a été basée sur l’utilisation de l’Atlas de palynologie (Reille 1990) et l’estimation de la densité relative selon la méthode de Feller-Desmaly et Parent (1989).
La richesse en espèces des plantes mellifères a été évaluée grâce à l’indice de diversité de Shannon Weaver (H’). Cet indice est accompagné par l’indice d’équitabilité de Piélou (J’) (Gray et al 1992). Ces indices ont été ensuite comparées entre les wilayas par le test d’homogénéité (α) (Brunet-Moret 1977) afin d’identifier ceux ayant un plus grand potentiel en plantes apicoles.
L’ensemble des stations échantillonnées a été soumis à une Analyse Canonique des Correspondances (ACC). Le croisement des données de la flore apicole codé en présence-absence avec les variables environnementales (exposition, altitude, substrat, taux de recouvrements des plantes ligneuses et herbacées, pâturage-incendie et activité agricole) est obtenu par cette analyse.
Les codes suivants ont été adoptés : [Expo : 1= Nord, 2= Sud, 3= Est, 4= Ouest/ Altitude : 1= ˃100 m, 2= 100 à 250 m, 3= de 250 à 500 m, 4= 500 à 750 m, 5= < 750 m/Trli et Trhe, : 1= ˃25%, 2= de 25 à 50%, 3= 50 à 75%, 4= de 75 à 100%/ PaIn et Acag: 1= activité minime, 2= activité légère, 3= activité moyenne, 4= activité très importante/Subs : 1= Quaternaire indifférencié, 2= nappe ultra tellienne, 3= grès numidiens, 4= roches éruptives récentes, 5= Flyschs massyliens, 6= pliocène continental, 7= marne et marno-calcaire, 8= Trias exotique].
Le nuage résultant de l’ACC permet de visualiser le pourcentage explicatif d’une variable sur une autre (Ter Braak 1995). Cette analyse a été effectuée en utilisant le langage informatique R (package ade4, version 3.0.2) (R Development Core Team 2013).
L’inventaire floristique des espèces mellifères dans la Numidie algérienne a permis d’identifier 192 espèces (Tableau 2). Elles ont été réparties en 148 genres et 42 familles. Les familles représentées par plus de dix espèces étaient celles des Fabaceae, Asteraceae, Lamiaceae, Rosaceae et Apiaceae représentant respectivement 15,6 ; 15,1 ; 10,4 ; 5,7 et 5,2% du total des espèces mellifères identifiées. Les familles moyennement représentées par plus de quatre espèces étaient : Amarylladaceae, Asparagaceae, Boraginaceae, Brassicaceae, Cucurbitaceae, Geraniaceae, Iridaceae, Plantaginaceae et Ranunculaceae. Les familles faiblement représentées par deux à trois espèces étaient : Anacradiaceae, Caprifoliaceae, Cistaceae, Convolvulaceae, Ericaceae, Malvaceae, Myrtaceae, Oleaceae, Papaveraceae, Rhamnaceae, Rutaceae, Scrophulariaceae, Solanaceae et Xanthorrhoeaceae.
Les autres familles telles que Aizoaceae, Araliaceae, Cactaceae, Cannabaceae, Crussulaceae, Dioscoreaceae, Fagaceae, Oxalidaceae, Polygonaceae, Resedaceae, Thymeleaceae, Verbenaceae et Moraceae n’étaient représentées que par une seule espèce mellifère.
En revanche, les espèces les plus butinées et à haute valeur apicole étaient au nombre de 26 représentant 13,5% de toutes les espèces inventoriées.
Ainsi qu’il ressort du Tableau 2, les ressources mellifères de la région d’étude sont constituées principalement d’une flore spontanée qui représente 90,1% (173 espèces) du total des plantes recensées et 9,9% des plantes cultivées.
Tableau 2. Liste des plantes mellifères recensées dans les quinze stations |
||||||||||||||||||||
Famille |
Code |
Taxon |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
11 |
12 |
13 |
14 |
15 |
Frq |
Couleur |
Floraison |
Aizoaceae |
x1 |
Carpobrotus edulis N. E. Br. |
x |
x |
x |
x |
40-60 |
Violette |
5-10 |
|||||||||||
Amaranthaceae |
x2 |
Beta vulgaris subsp. maritima (L.) Arcang. |
x |
x |
x |
x |
x |
5-10 |
Jaune |
6-9 |
||||||||||
Amarylladaceae |
x3 |
Allium nigrum L. |
x |
x |
1-5 |
Blanche |
6-7 |
|||||||||||||
x4 |
Allium roseum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
5-10 |
Rose |
4-5 |
|||||||
x5 |
Narcissus tazetta L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
3-4 |
||||||||
Anacardiaceae |
x6 |
Pistacia atlantica Desf. |
x |
x |
40-70 |
Pourpre |
3-4 |
|||||||||||||
x7 |
Pistacia lentiscus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Verte |
5-7 |
|||
Apiaceae |
x8 |
Apium nodiflorum (L.) Lag. |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
7-10 |
||||||||||
x9 |
Crithmum maritimum L. |
x |
x |
5-10 |
Blanche |
7-10 |
||||||||||||||
x10 |
Daucus carota subsp. maximus (Desf.) Ball |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Blanche |
5-10 |
|||||
x11 |
Daucus virgatus (Poir.) Maire |
x |
x |
x |
x |
x |
40-70 |
Blanche |
9-11 |
|||||||||||
x12 |
Ferula communis L. |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
4-6 |
||||||||||||||
x13 |
Kundmannia sicula (L.) DC. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
5-7 |
|||||||||
x14 |
Oenanthe globulosa L. |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Blanche |
4-5 |
|||||||||||
x15 |
Pimpinella lutea Desf. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
9-10 |
||||||||||
x16 |
Smyrnium olusatrum L. |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
5-7 |
||||||||||||
x17 |
Thapsia garganica L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
5-6 |
||||||||||
Araliaceae |
x18 |
Hedera algeriensis Hibberd |
x |
x |
100-200 |
Jaune |
9-10 |
|||||||||||||
Asparagaceae |
x19 |
Barnardia numidica (Poir) Spe t |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Rose |
9-11 |
||||||
x20 |
Bellevalia mauritanica Pomel |
x |
1-5 |
Violette |
2-3 |
|||||||||||||||
x21 |
Drimia numidica (Jord. & Fourr.) Manning & Goldblatt |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-50 |
Blanche |
7-10 |
|||||
x22 |
Hyacinthoides lingulata (Poir.) Rothm. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Bleue |
10-12 |
|||||||
x23 |
Oncostema peruviana (L) Speta |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
4-5 |
||||
x24 |
Prospero autumnale (L.) Speta |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Rose |
9-10 |
||||||
Asteraceae |
x25 |
Anacyclus clavatus (Desf.) Per |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche-jaune |
4-5 |
||||||||
x26 |
Andryala integrifolia L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
7-9 |
|||||||
x27 |
Anthemis maritima L. |
x |
x |
10-20 |
Blanche-jaune |
5-8 |
||||||||||||||
x28 |
Bellis annua L. subsp. annua |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche-jaune |
1-6 |
|
x29 |
Calendula arvensis (Vaill.) L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
1-10 |
|||||
x30 |
Calendula stellata Cav. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
5-10 |
Jaune |
3-6 |
|||||||||
x31 |
Calendula suffruticosa subsp. boissieri Lanza |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
2-4 |
|||||||||||||
x32 |
Centaurea pullata L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Rose |
5-6 |
|||||||
x33 |
Cichorium intybus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Bleue |
5-9 |
|||||||
x34 |
Cladanthus mixtus (L.) Chevall. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche-jaune |
5-6 |
||||||
x35 |
Dittrichia viscosa (L.) Greuter |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
8-10 |
|||
x36 |
Galactites mutabilis Durieu |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Rose |
4-6 |
|||||||
x37 |
Glebionis segetum (L.) Fourr. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
5-8 |
||||||||||
x38 |
Helminthotheca echioides Holu |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
6-8 |
|||
x39 |
Hyoseris radiata L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
4-6 |
|||||||
x40 |
Hypochaeris radicata L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
5-7 |
||||||||
x41 |
Lactuca serriola L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Jaune |
6-8 |
|||||||||
x42 |
Leontodon tuberosus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
5-6 |
||||||
x43 |
Lonas inodora Gaertner |
x |
20-40 |
Jaune |
5-6 |
|||||||||||||||
x44 |
Pallenis maritima (L.) Greuter |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
4-6 |
||||||||||||||
x45 |
Pulicaria odora (L.) Reichenb. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
4-6 |
||||
x46 |
Reichardia picroides (L.) Roth. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
4-7 |
||||||
x47 |
Rhaponticum acaule (L.) DC. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
4-6 |
||||||||
x48 |
Scolymus hispanicus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Jaune |
6-9 |
||||
x49 |
Scorzonera undulata subsp. deliciosa (Guss.) Maire |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Rose |
4-5 |
||||||||
x50 |
Senecio vulgaris L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
1-11 |
|||||
x51 |
Sonchusoleraceus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
5-10 |
||||||||
x52 |
Urospermum dalechampii (L.) F. W. SchMaidt |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
5-7 |
|||||||
Boraginaceae |
x53 |
Anchusa italica Retz. |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Bleue |
5-8 |
|||||||||||
x54 |
Borago officinalis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Bleue |
3-5 |
||
x55 |
Cerinthe major L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune-pourpre |
3-5 |
||||||||||
x56 |
Echium plantagineum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Bleue |
4-6 |
||||||
x57 |
Echium sabulicolum Pomel |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Bleue |
4-6 |
||||||||
Brassicaceae |
x58 |
Biscutella didyma L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
3-5 |
||||
x59 |
Brassica procumbens (Poir.) O. E. Schulz |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Jaune |
9-1 |
|||||||
x60 |
Lobularia maritima (L.) Desv. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
4-9 |
||||||
x61 |
Matthiola incana (L.) R. Br. |
x |
x |
1-5 |
Violette |
3-5 |
||||||||||||||
x62 |
Raphanus raphanistrum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
100-200 |
Blanche |
4-6 |
||||
x63 |
Sinapis arvensis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
4-9 |
|||||||
x64 |
Sinapis pubescens subsp. indurata (Coss.) Batt. |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
3-6 |
||||||||||||||
Cactaceae |
x65 |
Opuntia maxima Maill. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
8-9 |
||||||
Cannabaceae |
x66 |
Celtis australis L. |
x |
x |
10-20 |
Verte |
4-5 |
|||||||||||||
Caprifoliaceae |
x67 |
Fedia graciliflora Fisch. & C. A. Mey. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Rose |
3-6 |
||
x68 |
Lonicera implexa Aiton |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Jaune |
5-6 |
|||||||||||
x69 |
Sixalix atropurpurea (L.) Greuter & Burdet |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
5-7 |
||||||
Cistaceae |
x70 |
Cistus monspeliensis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
4-5 |
|||||||
x71 |
Cistus salvifolus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
4-5 |
|||||||
Convolvulaceae |
x72 |
Convolvulus tricolor L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Bleue |
4-5 |
||||||
x73 |
Convolvulus arvensis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Blanche-rose |
5-10 |
||||||||
Crussulaceae |
x74 |
Sedum sediforme (Jacq.) Pau |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
6-8 |
|||||||||||||
Cucurbitaceae |
x75 |
Bryonia dioica Jacq. |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Verte |
5-8 |
||||||||||
Dioscoreaceae |
x76 |
Dioscorea communis (L.) Caddick & Wilki |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Verte |
3-6 |
||||||||
Ericaceae |
x77 |
Arbutus unedo L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-100 |
Blanche |
10-1 |
|||||||||
x78 |
Erica arborea L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Blanche |
3-5 |
|||||||
x79 |
Erica mutiflora L. |
x |
x |
x |
10-20 |
Rose |
9-1 |
|||||||||||||
Fabaceae |
x80 |
Astragalus caprinus L. |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
4-5 |
|||||||||||
x81 |
Astragalus sesameus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
4-5 |
||||||||
x82 |
Calicotome villosa (Poir.) Link |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
100-300 |
Jaune |
3-5 |
||
x83 |
Ceratonia siliqua L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Pourpre |
8-10 |
||||||||
x84 |
Colutea arborescens L. |
x |
1-5 |
Jaune |
4-6 |
|||||||||||||||
x85 |
Cytisus villosus Pourr. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
3-5 |
|||||||
x86 |
Genista ferox (Poir.) Dum. Cours. subsp. ferox |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Jaune |
3-5 |
||
x87 |
Genista numidica Spach subsp. numidica |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
3-5 |
||||||||||||
x88 |
Genista ulicina Spach |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
3-5 |
||||
x89 |
Hedysarum coronarium L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-200 |
Pourpre |
3-5 |
||||
x90 |
Hedysarum glomeratum F.Diet. |
x |
x |
x |
20-30 |
Rose |
4-5 |
|||||||||||||
x91 |
Lathyrus clymenum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
4-5 |
|||||||||
x92 |
Lotus corniculatus L.subsp. corniculatus |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
3-6 |
|||||||||||
x93 |
Lotus drepanocarpus Durieu |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
5-7 |
||||||||||||||
x94 |
Lupinus angustifolius L. |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Bleue |
4-6 |
||||||||||||
x95 |
Lupinus luteus L. |
x |
10-30 |
Jaune |
3-5 |
|||||||||||||||
x96 |
Medicago littoralis Loisel. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
4-6 |
||||||||
x97 |
Medicago murex Willd. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
4-7 |
|||||
x98 |
Medicago sativa L. |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Violette |
8-10 |
||||||||||||
x99 |
Melilotus indicus (L.) All. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
4-5 |
|||||||||
x100 |
Retama raetam subsp. bovei (Spach) Talavera & Gibbs |
x |
x |
20-50 |
Blanche |
4-6 |
||||||||||||||
x101 |
Spartium junceum L. |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
5-7 |
||||||||||||
x102 |
Teline linifolia (L.) Webb & Berthel. |
x |
20-30 |
Jaune |
4-5 |
|||||||||||||||
x103 |
Tetragonolobus biflorus DC. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
3-5 |
||||||||
x104 |
Trifolium arvense L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Rose |
4-5 |
||||||
x105 |
Trifolium pratense L. |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
4-6 |
||||||||||||
x106 |
Vicia altissima Desf. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
5-6 |
|||||||
Fagaceae |
x107 |
Quercus coccifera L. |
x |
x |
20-30 |
Jaune |
4-5 |
|||||||||||||
Geraniaceae |
x108 |
Erodium aethiopicum (Lam.) Brumh. & Thell. |
x |
x |
1-5 |
Rose |
2-4 |
|||||||||||||
x109 |
Erodium moschatum (L.) L'Hér. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Rose |
4-9 |
|||||
x110 |
Geranium dissectum L. |
x |
x |
1-5 |
Rose |
3-5 |
||||||||||||||
x111 |
Geranium molle L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Rose |
3-5 |
|||||||||
Iridaceae |
x112 |
Gladiolus dubius Guss. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Rose |
4-6 |
||||||
x113 |
Iris juncea Poiret |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
4-6 |
||||||||||
x114 |
Moraea sisyrinchium Ker Gaw. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Bleue |
3-5 |
|||||
x115 |
Romulea bulbocodium Sebast. & Mauri subsp. bulbocodium |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-120 |
Violette |
2-4 |
|||||
x116 |
Romulea ligustica Parl. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-120 |
Violette |
2-4 |
||||||||
Lamiaceae |
x117 |
Ajuga iva (L.) Schreb. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Rose |
5-10 |
|||||||
x118 |
Calamintha ascendens Jord. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
9-11 |
|||||||||
x119 |
Lamium amplexicaule L. |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Mauve-rose |
4-5 |
|||||||||||
x120 |
Lavandula stoechas L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-120 |
Violette |
2-7 |
||
x121 |
Marrubium vulgare L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-30 |
Blanche |
5-9 |
||||||||||
x122 |
Mentha pulegium L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
7-9 |
||||||||||
x123 |
Mentha suaveolens Ehrh. subsp. suaveolens |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
7-9 |
||||||||||
x124 |
Micromeria graeca (L.) Benth. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Rose |
5-9 |
||||||
x125 |
Phlomis crinita Cav. |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
9-10 |
|||||||||||||
x126 |
Phlomis herba -venti L. subsp. pungens (Willd.) M. |
x |
x |
10-20 |
Rose |
4-6 |
||||||||||||||
x127 |
Prasium majus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
4-6 |
||||||||||
x128 |
Prunella vulgaris L. |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Blanche |
6-9 |
||||||||||||
x130 |
Origanum vulgare subsp. glandulosum Ietsw. |
x |
x |
70-100 |
Blanche-rose |
4-6 |
||||||||||||||
x129 |
Salvia verbinaca L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Violette |
3-5 |
||||||
x131 |
Stachys arvensis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Blanche |
4-5 |
|||||||||
x132 |
Stachys marrubiifolia Viv. |
x |
x |
200-300 |
Rose |
3-6 |
||||||||||||||
x133 |
Teucrium polium L. subsp. polium (L.) Briq. |
x |
x |
20-50 |
Blanche |
5-8 |
||||||||||||||
x134 |
Thymus algeriensis Boiss. & Reut. |
x |
x |
x |
x |
x |
100-200 |
Rose |
4-6 |
|||||||||||
x135 |
Thymus munbyanus subsp. coloratus Greuter & Burdet |
x |
x |
x |
x |
100-200 |
Rose |
6-7 |
||||||||||||
x136 |
Vitex agnus-castus L. |
x |
x |
30-50 |
Rose |
8-9 |
||||||||||||||
Malvaceae |
x137 |
Malva arborea L. |
x |
20-30 |
Mauve |
4-6 |
||||||||||||||
x138 |
Malva sylvestris L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Mauve |
4-6 |
|||
x139 |
Malva trimestris (L.) Salisb. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Mauve |
4-6 |
|||||||||
Myrtaceae |
x140 |
Eucalyptus globulus Labill. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
200-300 |
Blanche |
6-7 |
|||||
x141 |
Myrtus communis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Blanche |
9-10 |
|||||||||
Oleaceae |
x142 |
Olea europaea L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
5-7 |
||
x143 |
Phillyrea latifolia L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Blanche |
3-5 |
||||
Oxalidaceae |
x144 |
Oxalis pescaprae L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
200-300 |
Jaune |
9-5 |
Papaveraceae |
x145 |
Fumaria capreolata L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Blanche-rose |
4-6 |
|||||||
x146 |
Papaver rhoeas L. |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Rouge |
5-7 |
|||||||||||
Plantaginaceae |
x147 |
Antirrhinum tortuosum Bosc |
x |
1-5 |
Rose |
4-5 |
||||||||||||||
x148 |
Globularia alypum L. subsp. alypum |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Bleue |
2-4 |
||||||||||||
x149 |
Linaria flava (Poir.) Desf. |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
2-4 |
||||||||||||||
x150 |
Linaria pinifolia (Poiret) Thell. |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
3-5 |
||||||||||||||
x151 |
Plantago lanceolata L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-30 |
Verte |
3-5 |
||||||
x152 |
Plantago serraria L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
3-5 |
||||||
Polygonaceae |
x153 |
Rumex aristidis Coss. |
x |
1-5 |
Jaune |
5-7 |
||||||||||||||
Ranunculaceae |
x154 |
Clematis cirrhosa L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-30 |
Blanche |
10-3 |
||||
x155 |
Clematis flammula L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-30 |
Blanche |
5-8 |
|||||||||
x156 |
Nigella damascena L. |
x |
x |
x |
20-30 |
Blanche |
5-6 |
|||||||||||||
x157 |
Ranunculus bullatus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Jaune |
9-11 |
||||||||||
x158 |
Ranunculus ficaria L. |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
3-5 |
|||||||||||
x159 |
Ranunculus macrophyllus Desf. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Jaune |
3-5 |
||||||
Resedaceae |
x160 |
Reseda alba L. subsp. alba |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-100 |
Blanche |
5-9 |
|||||||
Rhamnaceae |
x161 |
Rhamnus alaternus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
2-4 |
||||
x162 |
Ziziphus lotus (L.) Lam. |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Jaune |
5-6 |
|||||||||||
Rosaceae |
x163 |
Crataegus azarolus L. |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
4-5 |
||||||||||
x164 |
Crataegus monogyna Jacq. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
4-5 |
|||||||
x165 |
Prunus prostrata Labill. |
x |
10-20 |
Blanche |
4-5 |
|||||||||||||||
x166 |
Rubus ulmifolius Schott |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Rose |
6-8 |
||||
Scrophulariaceae |
x167 |
Verbascum creticum (L.) Cav. |
x |
1-5 |
Jaune |
6-8 |
||||||||||||||
x168 |
Verbascum sinuatum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
1-5 |
Jaune |
6-8 |
||||||||
Solanaceae |
x169 |
Salpichroa origanifolia Baill. |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
6-9 |
||||||||||||
Thymeleaceae |
x170 |
Daphne gnidium L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
4-10 |
||
Verbenaceae |
x171 |
Verbena officinalis L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
5-10 |
Bleue |
6-10 |
|||||||
Xanthorrhoeaceae |
x172 |
Asphodeline lutea (L.) Rchb. |
x |
20-30 |
Jaune |
4-6 |
||||||||||||||
x173 |
Asphodelus ramosus L. subsp. ramosus |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-100 |
Blanche |
3-5 |
|
|
||||||||||||||||||||
Moraceae |
x174 |
Ficus carica L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-50 |
Verte |
5-7 |
|||||||
Rosaceae |
x175 |
Cydonia oblonga Maill. |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
5-6 |
|||||||||||
x176 |
Eriobotrya japonica (Thunb.) Lindl |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
100-150 |
Blanche |
10-12 |
||||||||||
x177 |
Malus pumila Maill. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
4-5 |
||||||||
x178 |
Prunus avium (L.) L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
4-5 |
|||||||||
x179 |
Prunus dulcis (Maill.) D.A. Web |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Blanche |
4-5 |
||||||||||||
x180 |
Pyrus bourgaeana Decne. |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Blanche |
4-5 |
||||||||||||
Rutaceae |
x181 |
Citrus ×aurantium L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Blanche |
11-12 |
||||||||
x182 |
Citrus reticulata Blanco |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
70-100 |
Blanche |
11-12 |
|||||||
|
||||||||||||||||||||
Amaryllidaceae |
x183 |
Allium cepa L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
5-10 |
Blanche |
7-9 |
||||
Asteraceae |
x184 |
Helianthus annuus L. |
x |
20-30 |
Jaune |
7-9 |
||||||||||||||
Cucurbitaceae |
x185 |
Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. & Nakai |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
7-9 |
||||||
x186 |
Cucumis melo L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
6-9 |
||||||||
x187 |
Cucurbita pepo L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
50-70 |
Jaune |
6-9 |
|||||||
Fabaceae |
x188 |
Phaseolus vulgaris L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
6-9 |
||||||||
x189 |
Pisum sativum L. subsp. sativum |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
10-20 |
Blanche |
6-7 |
|||||||
x190 |
Vicia faba L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
6-7 |
||||
Solanaceae |
x191 |
Solanum lycopersicum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
30-50 |
Blanche |
6-7 |
|||
x192 |
Solanum tuberosum L. |
x |
x |
x |
x |
x |
x |
20-30 |
Violette |
6-7 |
||||||||||
Frq. : Fréquence des visites |
Huit couleurs de fleurs ont été répertoriées dans les quinze stations étudiées. La couleur jaune était fortement représentée (68 espèces, soit 35,4%), suivie de la couleur blanche (60 espèces, soit 31,2%), et la couleur rose avec 30 espèces soit 15,6%. Les couleurs bleue (11 espèces, soit 5,7%) et violette (9 espèces, soit 4,7%) étaient moyennement représentées. Les autres couleurs étaient faiblement représentées dans la flore mellifère.
En fonction de la saison de floraison, trois catégories de plantes ont été distinguées : les plantes qui fleurissent en saison des pluies (137 espèces, soit 71,3%), celles fleurissant en saison sèche (48 espèces, soit 25%) et enfin celles qui fleurissent pratiquement toute l’année (7 espèces, soit 3,6%). Ainsi, dans notre zone d’étude, il n’y a pas de période où les plantes mellifères ne soient pas en fleurs avec cependant un pic au cours des mois février, mars et avril ce qui correspond à la grande période de miellée. Les plantes mellifères fleurissant sont surtout des plantes cultivées.
La Figure 2 réunit les principales données concernant la distribution des couleurs en fonction de l’effectif des abeilles. En hiver, entre novembre et janvier, les plantes avec des fleurs de couleur blanche sont les plus appréciées par les abeilles. Vers la fin d’hiver et durant le mois de février, la récolte est effectuée sur les plantes dont la fleur est violette (Romulea ligustica,R. bulbocodium subsp. bulbocodium et Lavandula stoechas).
Au début du printemps, la couleur jaune domine dans les pelouses des 5 wilayas. Les plantes les plus recherchées sont l’ Oxalis pes-caprae et le Calicotome villosa. Sur les falaises maritimes la couleur rose de la fleur d’une subendémique tyrrhénienne (Stachys marrubiifolia) est la plus appréciée par les abeilles. Cependant, la fleur pourpre de Sulla est bien présente pendant cette période de l’année. Quant à la fin de cette saison, la fleur d’Eucalyptus globulus a attiré un effectif de 300 abeilles. Cela donne un pic de la couleur blanche au cours de la saison estivale.
Durant la saison sèche les couleurs blanche et jaune de plusieurs espèces maraichères forment une bonne nourriture pour les abeilles.
Au début de l’automne, les fleurs entomophiles sont rares ; les fleurs roses de certaines bulbeuses sont butinées à leur tour : Barnardia numidica et Prospero autumnale, puis les fleurs jaunes de la liane Hedera algeriensis sont exclusivement visitées.
Figure 2. Calendrier de l’apparition des couleurs des fleurs des espèces les plus butinées par les abeilles |
Les paramètres de diversité de la flore mellifère montrent que pour les 5 wilayas, la richesse floristique varie de 144 à 161 espèces, l’indice de diversité Shannon-Weaver de 1,71 à 1,75 et l’indice d’équitabilité de Pielou de 0,92 à 0,94 pour les wilayas de Souk Ahras et Annaba respectivement, indiquant une flore globalement homogène (Tableau 3). Le test d’homogénéité de ces peuplements floristiques a montré globalement deux groupes non significativement homogènes constitués des flores mellifères des wilayas de Skikda, Annaba et El Tarf d’une part (α = 0,13) et d’autre part des flores de Guelma et Souk Ahras ( α = 0,09).
Tableau 3. Diversité floristique, indice de diversité de Shannon (H’) et d’équitabilité de Piélou (J’) de la flore mellifère dans les 5 wilayas |
||||
Wilayas |
Nombre |
H ′ |
J ′ |
Test |
Skikda |
156 |
1,74 |
0,93 |
0,13 |
Annaba |
161 |
1,75 |
0,94 |
|
El Tarf |
158 |
1,75 |
0,93 |
|
Guelma |
148 |
1,72 |
0,92 |
0 ,09 |
Soul Ahras |
144 |
1,71 |
0,92 |
|
L’analyse canonique des correspondances (ACC), réalisée sur la matrice des données floristiques et celle des variables environnementales, possède une inertie totale de 89,3%, dont respectivement 63% et 26 % sont portées par les axes 1 et 2 (Figure 3).
Les variables topographiques, altitude (Alti) et substrat (Subs) sont positivement corrélées à l’axe 1 et s’opposent à la variable exposition (Expo) négativement corrélée à cet axe.
L’axe 2 est corrélé à une variable dynamique et à un gradient anthropique. Il oppose un groupe de variables liées à la fermeture du milieu comme le recouvrement des espèces herbacées et ligneuses, du côté positif, à un autre groupe de variables liées à l’ouverture du milieu comme l’activité agricole, le pâturage et l’incendie.
Le long de l’axe 1, les stations s’organisent selon un gradient dynamique, en allant des stations du littoral (côté négatif) vers les stations continentales (côté positif).
Les stations qui se regroupent autour de la variable exposition (Expo) représentent les formations de maquis bas à Olea europaea L., Quercus suber L., Rhamnus alaternus L., Arbutus unedo L., Pistachia lentiscus L. (Lac Bleu, Chetaibi, Sidi Amar et Guerbes). Ces formations occupent les altitudes inférieures à 350 m et sont issues de l’évolution régressive des formations forestières découlant de l’action de l’homme.
La présence des espèces butinées (Medicago sativa L., Verbena officinalis L., Calendula arvensis (Vaill.) L., Astragalus sesameus L., Malva trimestris (L.) Salisb., et Glebionis segetum (L.) Fourr.) révèle le caractère herbacé pour ces stations. Cependant, les stations de Guerbes et du Lac Bleu étaient en conditions écologiques favorables pour les taxons de fleurs butinées psammophiles (Rumex aristidis Coss.,Retama raetam subsp. bovei,Erodium aethiopicum (Lam.) Brumh. & Thell. et Linaria pinifolia (Poiret) Thell.).
Cette analyse permet de mieux comprendre l’impact des facteurs de milieu, de l’activité agricole, des incendies et du surpâturage sur la présence et la distribution des plantes mellifères dans les stations étudiées.
Nous pouvons ainsi identifier sur le côté négatif de l’axe 2 un groupe constitué des plantes cultivées. Il regroupe les arbres fruitiers (Citrus reticulata Blanco, Prunus avium (L.) L., Citrus ×aurantium L., Cydonia oblonga Maill.) et les plantes maraichères (Helianthus annuus L.,Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. & Nakai,Cucurbita pepo L., Vicia faba L., Solanum lycopersicum L.). Les taxons faisant partie de ce groupe sont moyennement appréciés par les abeilles.
Le deuxième groupe est caractérisé par les variables taux de recouvrement des plantes herbacées et ligneuses ; il se retrouve du côté positif de l’axe 2 et s’oppose au premier. Il englobe des espèces hautement butinées par les abeilles comme Hedera algeriensis Hibberd, Genista ferox (Poir.) Dum. Cours. subsp. ferox, Genista ulicina Spach, Genista ulicinaSpach, Carpobrotus edulis N. E. Br., Daphne gnidium L., Calamintha ascendens Jord., Olea europaea L. et Retama raetam subsp. bovei (Spach) Talavera & Gibbs.
Figure 3. Carte de l’Analyse Canonique des Correspondances
(ACC) 15 stations x 192 espèces x 7 variables environnementales |
Les résultats obtenus permettent, d'après la densité relative de 15 échantillons de miel, de scinder la Numidie en deux zones de production bien distinctes (Tableau 4) :
- La zone côtière où, en raison de la modification qu'á subie la végétation au cours des dernières décennies (incendie et défrichement des terrains), la plupart des miels récoltés sont ceux d' Eucalyptus.
- Une zone intérieure où persistent les chênaies ( Quercus suber et Q. canariensis) qui représentent la végétation climax et où sont produits les miels deThymus algeriensis, Echium plantagineum et Calicotome villosa ou bien les miels de toutes les fleurs contenant une quantité importante du pollen de ces taxons.
II est possible de distinguer une troisième zone, une zone de transition de cultures où Citrus ×aurantium, Citrus reticulata et Hedysarum coronarium alternant ou partageant leur prédominance, donnent ainsi des miels toutes fleurs.
En revanche, le pollen de l'ensemble Eucalyptus- Hedysarum-Citrus-Oxalis représente près de 50 % des composants des miels analysés. Ces quatre types polliniques, avec en plus le pollen de Lavandula stoechas, Calicotome villosa, Echium plantagineum, Fedia graciliflora, Raphanus raphanistrum, Eriobotrya japonica, Erodium moschatum, Olea europaea et Rhamnus alaternus caractérisent les miels de la Numidie mais avec quelques spécificités pour chaque station. Néanmoins, les bruyères, bien que présentes dans la végétation de la zone étudiée, apparaissent en faible quantité dans les miels analysés. Le pollen des Ericaceae ne dépasse pas 2,5% dans deux localités montagneuses (Ain Senour et Megsmia). Cette faible représentation des bruyères trouve son explication dans la précocité de floraison des espèces (Erica arborea et E. mutiflora), ce qui restreint les possibilités de leur utilisation par les abeilles pour la production de miel.
Les deux méthodes couplées portent la flore mellifère de la région d’étude à 239 espèces. Toutefois, 145 espèces (soit 66,7%) ont été à la fois identifiées sur le terrain et dans les miels analysés.
Parmi les espèces exclusivement identifiées dans les miels, 47 espèces étaient en fleurs au cours de la période d’étude mais n’ont pas été recensées comme plantes mellifères par la méthode d’observation directe.
Tableau 4. La densité relative (Dr) des espèces identifiées dans les 15 échantillons de miels |
||||||
Site |
Pollens |
Pollens |
Pollens isolés |
Pollens isolés |
Taxons identifiés seulement dans le miel |
|
1 |
x89 |
x120, x173, x71, x139, x62, x82, x182, x56, x142, x144 |
x181, x151, x54, x143, x70, x71, x109, x160, x83, x63, x67, x90, |
x53,x73,x106, x152, x50,x17, x39, x148,x124,x134,x104, x6, x170,x178,x185,x177,x7, x10, x138, x122 |
Rosmarinus eriocalyx, Lotus sp., Alkanna tinctoria, Jasminum fruticans, Cistus albidus | |
2 |
x182 |
x142, x77, x144, x120, x10, x121, x176, x134, x162 |
x99, x8, x151, x171, x140, x54, x174, x166, x173, x163 |
x21, x106, x131, x145, x97, x175, x7, x104, x124, x101, x164, x138, x83 |
Hedysarum coronarium, Globularia alypum, Convolvulus sp., Eucalyptus camaldulensis | |
3 |
x89 |
x62, x134, x144, x86, x82, x120, x181, x161 |
x103, x145, x17, x10, x11, x54,x143, x70, x71, x83, x142, x109, x162 |
x15, x22, x121, x154, x55, x58, x72, x7, x79, x39, x97, x98, x59, x78, x127, x173, x57, x156, , x63, x67, x164 |
Hedysarum glomeratum, Cistus albidus, Astragalus caprinus, Eucalyptus globulus, Eucalyptus camaldulensis, Mentha pulegium | |
4 |
x89 |
x182, x130, x56, x173, x134, x120 |
x65, x163, x190, x64, x140, x109, x144, x82, x62, x54 |
x142, x138, x101, x6, x90, x139, x66, x103, x31, x53, x127, x10, x80, x161 |
Dorycnium rectum, Type Rosaceae, Mentha suaveolens, Melilotus indicus, Ornithogalum sp. | |
5 |
x82, x56 |
x144, x120, x182, x54, x115 |
x172, x80, x64, x173, x190, x67, x55, x32, x62, x33, x77 |
x59, x181, x90, x99, x126, x86, x28, x10, x91, x17, x104, x177, x35 |
Calicotome spinosa, Origanum vulgare subsp. glandulosum, Lotus sp., Quercus suber, Pistacia atlantica | |
6 |
x134 |
x176, x141, x24, x140, x130, x63, x57, x22, x142 |
x82, x122, x123, x101, x173, x56, x70, x71, x104, x161 |
x83, x67, x109, x68, x85,x78, x80, x115, x144, x119, x175, x16, x38, x143, x128, x36 |
Lotus sp., Nasturtium officinale, Stachys ocymastrum, Calicotome spinosa, Quercus canariensis | |
7 |
x144 |
x135, x89, x173, x82, x163, x162 |
x138, x63, x143, x8, x62, x99, x109, x86, x142, x73, x151 |
x7, x120, x181, x185, x67, x11, x36, x14, x115,x45, x97, x105, x57, x103, x175, x187 |
Dorycnium rectum, Quercus suber, Ononis sp. Echinops bovei, Medicago sp., Lotus sp., Type Brassicaceae |
|
8 |
x140 |
x18, x144, x107, x77, x100, x89, x141 |
x82, x67, x86, x120, x71, x139, x54, x19, x63, x173, x119, x122 |
x22, x24, x161, x11, x111, x95, x166, x35, x142, x50, x98, x171 x143, x115,x123, x185, x65, x76, x32, x188 |
Pinus pinaster, Tamarix sp., Lotus sp., Thymelaea hirsuta,Cistus halimifolius, Ulmus minor, Hypericum sp., Acacia sp. | |
9 |
x120 |
x160, x48, x89, x185, x176 |
x82, x144, x135, x19, x24, x56, x115, x62, x116, x182, x29, x99 |
x148, x141, x173, x22, x7, x59, x161, x187, x35, x92, x50, x32, x23, x91, x47 |
Ornithogalum sp., Cynoglossum cheirifolium, Muscari comosum, Quercus suber, Medicago sp. | |
10 |
x140 |
x77, x142, x56, x63, x82, x11 |
x59, x141, x89, x33, x116, x173, x28, x120, x176, x10, x32, x109 |
x190, x128, x83, x87, x166, x122, x54, x48, x144, x14, x35, x154, x131, x8, x70, x71 x94, x127, x159, x62, x129 |
Stachys ocymastrum, Vicia sicula, Quercus suber, Eucalyptus camaldulensis, Populus alba, Citrullus lanatus, Rosmarinus officinalis | |
11 |
x140 |
x161, x83, x141, x18, x181 |
x67, x162, x99, x82, x120, x144, x62, x12, x85, x8, x68, x24, x186 |
x19, x56, x109, x21, x135, x22, x102, x45, x77, x49, x63, x16, x187, x52, x36, x50 |
Ulmus minor, Polygala sp., Calystegia sepium, Geranium sp., Hypericum sp. Echinops bovei, Ranunculus sp. | |
12 |
x140 |
x48, x89, x129, x173, x31 |
x54, x144, x136, x120, x111, x142, x59, x132 |
x174, x86, x1, x115, x103, x2, x4, x62, x93, x70, x82, x71, x138, x160, x67, x42 |
Apium nodiflorum, Anthemis sp., Helichrysum rupestre, Ononis sp. Type Rosaceae | |
13 |
x182 |
x186, x100, x89, x185, x138 |
x187, x115, x120, x177, x140, x48, x176, x62, x8 |
x59, x107, x82, x188, x146, x151, x189, x54, x136, x166, x11, x65, x161, x73, x92, x28, x129, x109, x173 |
Dorycnium rectum, Lythrum sp., Salix pedicellata, Alnus glutinosa, Hypericum sp., Type Polygonaceae, Fraxinus angustifolia, | |
14 |
x140 |
x31, x89, x109, x82, x132 |
x160, x99, x144, x54, x120, x24, x48, x7, x56 |
x139, x118, x103, x9, x27, x93, x173, x137, x86, x91, x127, x104, x70, x71, x166 |
Ferula communis , Asparagus sp.,Artemisia arborescens, Daucus sp., Tamarix sp. |
|
15 |
x181 |
x182, x191, x135, x144, x120 |
x109, x187, x115, x89, x138, x50, x140, x160, x82, x176 |
x123, x170, x81, x63, x77, x146, x186, x56, x67, x131, x180, x190, x142, x10, x32 |
Pinus pinaster , Type Rosaceae, Carduus sp., Ononis sp., Type Campanulaceae, Euphorbia sp. |
|
La connaissance de la flore mellifère reste toujours partielle. Les résultats du présent travail ont permis de dénombrer 192 espèces mellifères par l’observation directe. Cette richesse spécifique mellifère est nettement supérieure au total des 107 espèces recensées dans la péninsule de l’Edough (Hamel et Boulemtafes 2017) et des 103 espèces enregistrées dans les plaines de la Mitidja (Mekious et al 2018). Cette flore mellifère pourrait s’expliquer par la diversité floristique existante en Algérie (qui inclut nos sites d’observations) et qui renferme plus de 4 445 espèces (Dobignard et Chatelain 2010-2013).
Toutefois, les espèces mellifères identifiées appartiennent à diverses familles dont les plus représentées sont les Fabaceae, Asteraceae, Lamiaceae, Rosaceae et Apiaceae. Cependant, la majorité des plantes présentes dans la région d’étude font parties des familles Fabaceae, Lamiaceae et Asteraceae. Ceci n’est pas surprenant, compte tenu que ces familles de plantes semblent être les plus importantes sources de nourritures pour les abeilles (Boutabia et al 2016 ; Hamel et Boulemtafes 2017). Une autre explication possible est que la végétation au Nord-Est algérien est représentée par ces différentes familles (de Bélair 1990 ; Hamel 2013 ; Hamel et al 2013). Nos résultats ont corroboré ceux de Rabiet (1984) sur l’identification des plantes mellifères au Maroc, montrant que les Fabaceae, Asteracae et Lamiaceae sont les principaux taxa représentant la flore mellifère inventoriée. Mahouachi (2008) a également observé que la flore mellifère de la Tunisie était représentée par les Fabaceae, Asteraceae et Apiaceae.
Les plantes mellifères dont les fleurs étaient moyennement et faiblement butinées représentaient 86,4% de la flore recensée (166 espèces). Ces résultats corroborent ceux de Hamel et Boulemtafes (2017), obtenus dans la péninsule de l’Edough et où la flore mellifère était dominée par des espèces faiblement butinées.
L’évolution du cortège floristique des plantes mellifères de la Numidie au cours d’un cycle annuel laisse transparaître une disponibilité permanente des ressources florales scindée en deux périodes et reliées par une étape transitoire. La première période est caractérisée par une importante floraison des arbres fruitiers et des plantes maraichères en saison sèche et la seconde période est marquée par une disponibilité prédominante des espèces herbacées pendant la saison des pluies. Ces deux périodes sont intercalées par la floraison des plantes ligneuses et herbacées en début de la saison des pluies. Le nombre d’espèces butinées au cours de l’année est nettement en dessous de celui des espèces en fleurs. Ces résultats confirment ceux obtenus dans la région de Constantine au Nord-Est algérien (Louadi et al 2007). Cela signifie que le potentiel apicole d’un site n’est pas directement lié à la quantité de plantes en fleurs du milieu et qu’il faut plutôt tenir compte de la valeur mellifère des espèces et de leur abondance dans l’estimation des potentialités apicoles d’une station (Telailia et al 2011).
La diversité des couleurs des fleurs des plantes mellifères est en rapport avec la richesse de la flore du milieu écologique (Dongock et al 2017). Dans leurs travaux sur les couleurs des fleurs des plantes mellifères de la péninsule de l’Edough, Hamel et Boulemtafes (2017) ont également relevé une grande diversité. Si dans l’ensemble, nous avons retrouvé les mêmes types de couleurs de fleurs dans notre zone d’étude, les couleurs jaune, blanche et rose sont les plus caractéristiques des plantes mellifères étudiées ; elles représentent plus de 80% des plantes recensées. Selon Backhaus (1993), la vision des couleurs chez les abeilles est assurée par trois types de photorécepteurs : ultraviolet (UV), bleu et vert. Aussi, le rouge apparaît noir pour l’abeille. Les abeilles peuvent distinguer sur les fleurs des marques ultra-violettes que les humains ne voient pas et qui leur indiquent par exemple la direction des nectaires de ces fleurs.
L’importante représentation des plantes spontanées dans la flore mellifère de la zone d’étude traduit des régions de mosaïque où les lambeaux forestiers sont maintenus à proximité des champs, offrant aux abeilles la possibilité d’exploiter la flore présente selon les différentes formes d’utilisation des terres (perturbées, défrichées, cultivées et jachères). En nous appuyant sur les travaux de Boutabia et al (2016), nous pouvons confirmer que le comportement de butinage des abeilles est lié à la structure de la végétation.
Cependant, l’abeille domestique montre une prédilection pour les fleurs des plantes spontanées étudiées. L’exploitation des fleurs de ces plantes par les abeilles dépend de la morphologie florale (Jacob-Remacle 1989) et de la nature et la composition du nectar (Hagler et al 1990). La lavande offre un très bon nectar dont les abeilles sont très friandes. Ce nectar est très aromatique et très apprécié par les abeilles (Loublier et al 1994 ; Hamel et Boulemtafes 2017). Le sainfoin d’Italie ou sulla du Nord, Hedysarum coronarium est une plante méditerranéenne qui présente aussi un grand intérêt pour les abeilles (Makhloufi et al 2010). Les fleurs des Lamiaceae endémiques sensu Dobignard et Chatelain (2012) (Origanum vulgare subsp. glandulosum, Stachys marrubiifolia, Thymus algeriensiset Thymus munbyanus subsp. coloratus) attirent les abeilles et favorisent la production de miel spécifique de qualité utilisé surtout pour le traitement des problèmes de toux convulsives et l'asthme (Irlande 2010 ; Hamel et al 2018).
La dominance de pollen de Hedysarum coronarium dans 3 échantillons de miel s’explique par l’importance de la culture de cette espèce dans ces régions. Louveaux et Abed (1984) soulignent que l’ Hedysarum coronarium est dominant en Afrique du Nord, ce qui concorde avec nos résultats. Les miels riches en pollen de Citrus constituent les miels les plus produits dans les stations cultivées.
Le genre Eucalyptus a été introduit en Algérie pour son intérêt économique, médicinal et esthétique. Le pollen de ces espèces ( E. globulus et E. camaldulensis) constitue une source importante pour la production de miel (Benaziza-Bouchema et Schweitzer 2010).
Les plantes spontanées qui sont peu visitées comme le Convolvulus arvensis, Convolvulus tricolor et Fumaria capreolata, ont les pétales soudés et fermés au sommet. Elles rendent difficile l'accès au nectar et au pollen.
L’analyse de la flore mellifère de la Numidie révèle son originalité floristique, induite par les particularités orographique et surtout écologique. Ces conditions ont permis le développement et le maintien d’une flore riche et diversifiée (plus de 140 espèces mellifères par wilaya). Cela explique l’appartenance de cette région au onzième point névralgique «hot-spot» régional de biodiversité en Méditerranée, dénommé «Kabylie–Numidie–Kroumirie» (Véla et Benhouhou 2007).
Il ressort de l’ACC que la distribution des plantes butinées dépend des facteurs environnementaux. En effet, cette analyse explique l’effet des activités agricoles et les incendies récurrents sur l’évolution régressive des formations végétales de la Numidie. Les réponses de cette flore à ces facteurs et aux perturbations anthropiques sont exprimées par leurs traits de vie (plus de plantes annuelles que de plantes vivaces). Cette stratégie de vie est très fréquente dans la flore méditerranéenne (Barbéro et al 2001).
Bien entendu, l’usage des pesticides dans les champs de cultures perturbe les abeilles et entraîne une diminution dans la fréquence des visites des fleurs et la contamination du miel (Chauzat et al 2009 ; Bernal et al 2010 ; Lambert et al 2013).
La présence du pollen de 145 taxons dans les miels analysés pourrait s’expliquer par le fait qu’ils constituent des réserves polliniques emmagasinées pendant leur floraison en saison sèche. En effet, selon Mekious et al (2015), les réserves de pollen ne sont entièrement épuisées de la ruche qu’après six mois de stockage. Dans le cas de cette étude, la durée entre la période d’étude et la période de floraison des espèces est inférieure à six mois. Ce qui justifie leur présence dans les miels échantillonnés et analysés.
L’identification des espèces seulement dans le miel, pourrait s’expliquer par le fait que, soit leurs périodes de floraison ne coïncidaient pas avec celles des visites de terrain, soit elles n’ont pas été repérées au cours des prospections sur le terrain comme l’ont fait observer Draiaia et al (2014), les abeilles pouvant les butiner moins de deux minutes.
Les auteurs remercient sincèrement les membres de l’ association des Apiculteurs Edough pour leurs aides, informations et conseils.
Achou M, Loucif-Ayad W, Legout H, Hmidan H, Alburaki M and Garnery L 2015 An Insightful Molecular Analysis Reveals Foreign Honeybees Among Algerian Honeybee Populations (Apis mellifera L.). Journal of J Data Mining in Genomics & Proteomics 6 (1), 23-31. DOI: 10.4172/2153-0602.1000166
Adjilane N, Doumandji S et Haddad N 2012 Situation de l’apiculture en Algérie : facteur menaçant la survie des colonies des abeilles locales Apis mellifera intermissa. Cahiers d’agricultures 21(4), 234-241. Doi : https://doi.org/10.1684/agr.2012.0566
Backhaus W 1993 Color vision and color choice behavior of the honey bee. Apidologie 24, 309-331. DOI : https://doi.org/10.1051/apido:19930310
Barbéro M, Loisel R, Médail F et Quézel P 2001 Signification biogéographique et biodiversité des forêts du bassin méditerranéen. Bocconea 13, 11-25. http://www.herbmedit.org/bocconea/13-011.pdf
Belhadi A et Benabdeli K 2010 Impact des écosystèmes forestiers des Monts de Béni Chougrane (Mascara-Algérie) dans l’amélioration du potentiel mellifère. Mediterranea 21(2), 9-27. https://rua.ua.es/dspace/bitstream/10045/28577/1/Mediterranea_21.pdf
Benaziza-Bouchema D et Schweitzer P 2010 Caractérisation des principaux miels des régions du Nord de l'Algérie. Cahiers d’agricultures 19 (6), 1-7. Doi :https://doi.org/10.1684/agr.2010.0432
Bernal J, Garrido-Bailón E, Del Nozal MJ et al. 2010 Overview of pesticide residues in stored pollen and their potential effect on bee colony (Apis mellifera) losses in Spain. J. Econ. Entomol. 103, 1964–1971. https://doi.org/101603/EC10235
Boutabia L, Telailia S et Chefrour A 2016 Spectre pollinique de miels d'abeille (Apis mellifera L.) de la région d'El Tarf (Nord-Est algérien). Livestock Research for Rural Development 28 (8) www.lrrd.org/lrrd28/8/tela28150.html
Brunet-Moret Y 1977 Test d’homogénéité. Cah. Orstom, Ser. Hydrol., 14 (2), 119-128. http://horizon.documentation.ird.fr/exldoc/pleinstextes/pleins_textes_4/hydrologie/14939.pdf
Chauzat MP, Carpentier P, Martel AC, Bougeard S, Cougoule N, Porta P, Lachaize J, Madec F, Aubert M and Faucon JP 2009 Influence of pesticide residues on honey bee (Hymenoptera: Apidae) colony health in France. Environmental Entomology 38, 514–523. DOI: 10.1603/022.038.0302
Chefrour A, Draiaia R, Tahar A, Ait Kaki Y, Bannadja S and Battesti MJ 2009 Physicochemical characteristics and pollen spectrum of some North-East Algerian honeys. AJFAND 9(5), 1276-1293. https://www.ajol.info/index.php/ajfand/article/view/45101/28591
Cote M 1974 Carte bioclimatique de l'Est algérien. I.S.T. Univ. Constantine, Algérie.
De Bélair G 1990 Structure, fonctionnement et perspectives de gestion de quatre écocomplexes lacustres et marécageux : El Kala, Est algérien, Thèse de Doctoral dissertation, 347p.
Dobignard A et Chatelain C 2010-2013 Index synonymique et bibliographique de la flore d'Afrique du Nord. Vol. 1-5. Base de données des plantes d'Afrique, 458p, 428p, 449p, 431p, 442p.
Dongock ND, Avana TML, Djimasngar M, Goy S et Pinta JY 2017 Importance écologique et potentialité apicole à la périphérie du Parc national de Manda en zone soudanienne du Moyen-Chari (Tchad). International Journal of Environmental Studies, 74 (3), 443–457. Doi.org/10.1080/00207233.2017.1294424
Draiaia R, Rezki AR, Ben nacer K and Chefrour A 2014 Quality of Some Algerian Honey: Study of Botanical and Some Physicochemical Parameters. Middle-East Journal of Scientific Research 22 (9), 1363-1371.
Feller-Demasly MJ et Patent J 1989 Analyse pollinique des miels de l’Ontario, Canada. Apidologie 20, 127-38. https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00890769/document
Gray JS, Mcintyre AD et Stirn J 1992 Manuel des méthodes de recherche sur l'environnement aquatique. Onzième partie. Evaluation biologique de la pollution marine, eu égard en particulier au benthos. FAO Document technique sur les pêches, 142p.
Halgar JR, Cohen AC and Loperm CM 1990 Production and composition of onion Nectar and Honey bee (Hymnoptera, Apidae) foragin activityin Arizona. Environnemental Enthomology 19(2), 327-331. https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00890817/document
Hamel T 2013 Contribution à l’étude de l’endémisme chez les végétaux vasculaires dans la péninsule de l’Edough (Nord-Est algérien). Thèse de Doctorat, Université Badji Mokhtar Annaba, Algérie, 338p.
Hamel T et Boulemtafes A 2017 Plantes butinées par les abeilles à la péninsule de l’Edough (Nord-Est algérien). Livestock Research for Rural Development 29 (9). http://www.lrrd.org/lrrd29/9/tare29181.html
Hamel T, Sadou N, Seridi R, Boukhdir S et Boulemtafes A 2018 Pratique traditionnelle d’utilisation des plantes médicinales dans la population de la péninsule de l’Edough (nord-est algérien). Ethnopharmacologia 59, 65-71. http://www.ethnopharmacologia.org/wp-content/uploads/2018/05/Ethnopharm59-Hamel.pdf
Hamel T, Seridi R, de Bélair G, Slimani AR et Babali B 2013 Flore vasculaire rare et endémique de la péninsule de l’Edough (Nord–Est algérien). Revue Synthèse des Sciences et de la Technologie 26: 65-74. https://docplayer.fr/47794175-Flore-vasculaire-rare-et-endemique-de-la-peninsule-de-l-edough-nord-est-algerien.html
Irlande D 2010 Le miel et ses propriétés thérapeutiques. Masson, Paris, 25 p.
Jacob-Remacle F 1989 Comportement de butinage de l’abeille domestique et des abeilles sauvages dans des verges de pommiers en Belgique. Apidologie 20(4), 271-285. https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00890783/document
Lambert O, Piroux M, Puyo S, Thorin C, L’Hostis M, Wiest L, et al 2013 Widespread occurrence of chemical residues in beehive matrices from apiaries located in different landscapes of Western France. PLoS ONE 8(6). Doi: 10.1371/journal.pone.0067007.
Louadi K, Benachour K and Berchi S 2007 Floral visitation patterns during spring in Constantine-Algeria. African Enthomology 15 (1), 209-213. Doi: 10.4001/1021-3589-15.1.209
Loublier Y, Piana ML, Pham Delegue MH et Borneck R 1994 Caractérisation pollinique des miels français de lavande : premiers résultats. Grana 33, 231-238. doi.org/10.1080/00173139409429004
Louveaux J et Abed L 1984 Les miels d’Afrique du Nord et leur spectre pollinique. Apidologie 15, 145-70. https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00890621
Louveaux J, Maurizio A and Vorwohl G 1978 Methods of melissopalynology. Bee World 59, 139-57. http://chemistry.armstrong.edu/nivens/Chem3300/methmels.pdf
Mahouachi M 2008 Etude de faisabilité de la mise en place de signes distinctifs de la qualité et/ou d’origine pour le miel tunisien. Ministère de l’agriculture et des ressources hydrauliques Tunisie, 178p.
Maire R 1952-1987 Flore de l’Afrique du Nord (Maroc, Algérie, Tunisie, Tripolitaine, Cyrenaique et Sahara). 16 vols, Lechevalier, Paris.
Makhloufi C, Kerkevlet JD, D’albore GR, Choukri A and Samar R 2010 Characterization of Algerian honeys by palynological and physico-chemical methods. Apidologie 41, 509–521. Doi: 10.1051/apido/2010002
Makhloufi C, Kerkvfiet J and Scheweizer P 2015 Characterisation of some monofloral Algerian honeys by pollen analysis. Grana 54 (4), 156-166. Doi.org/10.1080/00173134.2014.999116
Makhloufi C, Scheweizer P, Azouzi C, Persano OL, Choukri A, Hocine L and Ricciardelli D’Albore G 2007 Some properties of Algerian Honey. Apiacta 42, 73-80. Doi : 10.1051/apido/2010002
Mekious S, Houmani Z, Bruneau E, Masseaux C, Guillet A et Hance T 2015 Caractérisation des miels produits dans la région steppique de Djelfa en Algérie. Biotechnol., Agron. Soc. Environ. 19(3), 219-229. https://pdfs.semanticscholar.org/8a83/ df7d328ec2146b9c3de36b125ad4b584e60d.pdf
Mekious S, Houmani Z et Houmani M 2018 Étude des potentialités mellifères de deux régions du Nord de l’Algérie. Phytothérapie 16, 275–280. https://doi.org/10.3166/s10298-016-1059
Nedji N and Loucif-Ayad W 2014 Antimicrobial Effects of Algerian Honey on Pathogenic Food-Related Bacteria. Advance Journal of Food Science and Technology 6(11), 1194-1200. DOI:10.19026/ajfst.6.184
Pignatti S 1982 Flora d'Italia. Vol. 2. Edagricole, 732 p.
Quézel P et Santa S 1962 Nouvelle flore de l’Algérie et des régions désertiques méridionales. Tome I. Editions du Centre National de la Recherche Scientifique, Paris 7e, 1090p.
Quézel P et Santa S 1963 Nouvelle flore de l’Algérie et des régions désertiques méridionales. Tome II. Editions du Centre National de la Recherche Scientifique, Paris 7e, 1170 p.
R Development Core Team 2013 R: A language and environment for statistical computing. -R Foundation for statistical computing, Vienna, Austria. http://www.R-project.org
Rabiet E 1984 Plantes mellifères, plantes apicoles : Rapport entre les plantes et l’abeille domestique. Ed. Rabiet E., Grand Casablanca, Maroc, 424p.
Reille M 1990 Leçon de palynologie et analyse pollinique. Ed. Centre Nationale de la Recherche Scientifique. Paris, pp: 1-20.
Seltzer P 1946 Le climat de l’Algérie. La Typo-Litho, Alger, 217p.
Telailia S, Boutabia L, Necib N et Chefrour A 2011 Les plantes mellifères des massifs forestiers littoraux de l’extrême Est algérien: inventaire et étude mélissopalynologique. Annales de l’INRGREF 15 (Numéro spécial), 215-229.
Ter Braak CJF 1995 Ordination: Data analysis in community and landscape ecology. in: Jongman RHG, Ter Braak CJF, Van Tongeren O.F.R. (eds). Ordination: Data analysis in community and landscape ecology. Cambridge University Press, Cambridge.
Véla E et Benhouhou S 2007 Evaluation d’un nouveau point chaud de biodiversité végétale dans le bassin méditerranéen (Afrique du Nord). Compte Rendus Biologies 330, 589-605. Doi : 10.1016/j.crvi.2007.04.006
Von der Ohe W, Persano Oddo L, Piana L, Morlot M and Martin P 2004 Harmonised methods of melissopalynogie. Apidologie 35, 18-25.
Yahi N, Véla E, Benhouhou S, de Bélair G and Gharzouli R 2012 Identifying important plants areas (key biodiversity areas for plants) in northern Algeria. Journal of threatened taxa 4, 2753-2765. https://threatenedtaxa.org/index.php/JoTT/article/view/781/1397
Received 22 August 2019; Accepted 28 September 2019; Published 2 November 2019